Arias-Sanz P., et. al.
CONCLUSIONES
1. El protocolo anestésico descrito es una alternativa váli-da
para la inducción de un modelo de estrés respiratorio en la
especie porcina mediante lavado broncoalveolar y arrastre de
surfactante.
2. Dicho protocolo ha permitido el desarrollo de un proce-dimiento
de validación de un prototipo respirador sobre modelo
porcino.
3. En la realización de este proyecto, el protocolo de sedo-analgesia
descrito ha permitido el mantenimiento de las condi-ciones
que dieron lugar a su autorización, habiendo quedado
garantizado el adecuado cuidado de los animales implicados.
Agradecimientos
Agradecemos a Ennomotive y a la fundación Vithas la con-fianza
puesta en el SMCEX para el desarrollo de este proyecto
en nuestras instalaciones, así como a todo el personal facultativo
y técnico del Servicio por el entusiasmo y dedicación puestos en
el desarrollo del mismo.
BIBLIOGRAFÍA
1. Duval JD, Pang JM, Boysen SR and Caulkett1 NA. Cardiopulmonary
Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine.
JAALAS 2018; 57(4): 376-381.
2. Russ M, Kronfeldt S, Boemke W, Busch T, Francis RC, Pickerodt PA. Lava-ge-
induced surfactant depletion in pigs as a model of the acute respiratory
distress syndrome (ARDS). J. Vis Exp 2016; 7: 1-8.
220 Sanid. mil. 2020; 76 (4)
3. Dickson RP, Hotchkin DL, Lamm W, Hinkson C, Pierson DJ, Glenny RW,
Rubinson L. A Porcine Model for Initial Surge Mechanical Ventilator As-sessment
and Evaluation of Two Limited Function Ventilators. Crit Care
Med 2011; 39(3): 527-532.
4. Muellenbach RM, Kredel M, Bernd Z, Johannes A, Kuestermann J, Schus-ter
F, Schwemmer U, Wurmb T, Wunder C, and Roewer N. Acute respira-tory
distress induced by repeated saline lavage provides stable experimen-tal
conditions for 24 hours in pigs. Experimental Lung Research2009; 35:
222-233.
5. Flecknell P. Special techniques. En: Flecknell P. Laboratory animal anaesthe-sia.
3ª ed. Londres: Elsevier, 2009: 79-95.
6. Ministerio de Sanidad. Agencia Española de Medicamentos y Productos Sa-nitarios
Información sobre prototipos de respiradores. Pruebas de seguridad
y requisitos de investigacion clínica 27 marzo 2020.
7. Nahas K, Baneux, P, Detweiler D., Electrocardiographic Monitoring in the
Göttingen Minipig. Comp Med 2002; 52: 258-264.
8. Ranieri VM, Rubenfeld GD, Thompson BT, Ferguson ND, Caldwell E, Fan
E, Camporota L, Slutsky AS. Acute Respiratory Distress Syndrome: The
Berlin Definition. JAMA, 2012; 307(23): 2526-2533.
9. Flecknell P. Anaesthetic management. En: Flecknell P. Laboratory animal
anaesthesia. 3.ª ed. Londres: Elsevier, 2009: 79-95.
10. Santos González M, Bertrán de Lis BT, Tendillo Cortijo FJ. Effects of in-tramuscular
alfaxalone alone or in combination with diazepam in swine. Vet
Anaesth Analg 2013; 40: 399-402.
11. Santos González M, Bertrán de Lis BT, Tendillo Cortijo FJ. Effects of intra-muscular
dexmedetomidine in combination with ketamine or alfaxalone in
swine. Vet Anaesth Analg 2016; 43: 81-85.
12. Sakaguchi M, Nishimura R, Sasaki N, Ishiguro T, Tamura H,Takeuchi A..
Enhancing effect of butorphanol on medetomidine-induced sedation in pigs.
J Vet Med Sci 1992; 54: 1183-1185.
13. De Monte V, Staffieri F, Di Meo A, Vannucci J, Bufalari A. Comparison of
ketamine-dexmedetomidine-methadone and tiletamine-zolazepam-metha-done
combinations for short-term anaesthesia in domestic pigs. Vet J; 205:
364-368.
14. Real Decreto 53/2013, de 1 de febrero, por el que se establecen las normas
básicas aplicables para la protección de los animales utilizados en experimen-tación
y otros fines científicos, incluyendo la docencia.